Ewolucja czy rewolucja w terapii nabytej niewydolności rąbka rogówki: Holoclar® – nowy lek zawierający komórki macierzyste nabłonka rogówki

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Dariusz Dobrowolski
Bogumił Wowra
Ewa Wróblewska-Czajka
Katarzyna Krysik
Maria Grolik
Edward Wylęgała

Abstrakt


Leczenie niewydolności rąbka rogówki wkroczyło w nowy etap. W terapii zastosowano komórki pochodzące z hodowli. Tkanka uzyskana w laboratorium zawiera komórki macierzyste nabłonka rogówki pozyskane ze strefy rąbkowej. Dzięki temu zastąpienie hodowanym nabłonkiem patologicznych tkanek zapewnia jego stałą odnowę, tak jak dzieje się to w warunkach fizjologicznych. Do inicjacji hodowli wystarczy zaledwie 2 mm2 rąbka rogówki; pobrane komórki wytwarzają prawidłowy wielowarstwowy nabłonek, który zawiera też pulę komórek macierzystych. Odległe obserwacje potwierdzają, że z zastosowaniem tej metody można trwale odtwarzać powierzchnię nabłonkową rogówki.

Pobrania

Dane pobrania nie są jeszcze dostepne

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Jak cytować
1.
Dobrowolski D, Wowra B, Wróblewska-Czajka E, Krysik K, Grolik M, Wylęgała E. Ewolucja czy rewolucja w terapii nabytej niewydolności rąbka rogówki: Holoclar® – nowy lek zawierający komórki macierzyste nabłonka rogówki. Ophthatherapy [Internet]. 28 wrzesień 2018 [cytowane 3 lipiec 2024];5(3):137-41. Dostępne na: https://journalsmededu.pl/index.php/ophthatherapy/article/view/532
Dział
Artykuły

Bibliografia

1. Shanmuganathan VA, Rotchford AP, Tullo AB et al. Epithelial proliferative potential of organ cultured corneoscleral rims; implications for allo-limbal transplantation and eye banking. Br J Ophthalmol. 2006; 90: 55-8.
2. Pellegrini G, Ranno R, Stracuzzi G et al. The control of epidermal stem cells (holoclones) in the treatment of massive full-thickness burns with autologous keratinocytes cultured on fibrin. Transplantation. 1999; 68: 868-79.
3. Hultman CS, Brinson GM, Siltharm S et al. Allogeneic fibroblasts used to grow cultured epidermal autografts persist in vivo and sensitize the graft recipient for accelerated second-set rejection. J Trauma. 1996; 41: 51-8.
4. Tsai RJ, Li LM, Chen JK. Reconstruction of damaged corneas by transplantation of autologous limbal epithelial cells. N Engl J Med. 2000; 343: 86-93.
5. Koizumi N, Cooper LJ, Fullwood NJ et al. An evaluation of cultivated corneal limbal epithelial cells, using cell suspension culture. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2002; 43: 2114-21.
6. Pellegrini G, Lambiase A, Macaluso C et al. From discovery to approval of an advanced therapy medicinal product-containing stem cells, in the EU. Regen Med. 2016; 11: 407-20.
7. Pellegrini G, Golisano O, Paterna P et al. Location and clonal analysis of stem cells and their differentiated progeny in the human ocular surface. J Cell Biol. 1999; 145: 769-82.
8. Rama P, Bonini S, Lambiase A et al. Autologous fibrin-cultured limbal stem cells permanently restore the corneal surface of patients with total limbal stem cell deficiency. Transplantation. 2001; 72: 1478-85.
9. Pellegrini G, Rama P, Matuska S et al. Biological parameters determining the clinical outcome of autologous cultures of limbal stem cells. Regen Med. 2013; 8: 553-67.
10. Pellegrini G, Dellambra E, Golisano O et al. p63 identifies keratinocyte stem cells. Natl Acad Sci U S A. 2001; 98: 3156-61.
11. Rama P, Matuska S, Paganoni G et al. Limbal stem-cell therapy and long-term corneal regeneration. N Engl J Med. 2010; 363: 147-55.